РИС. 43Как это устроено

АТФ-синтаза: исследуйте, как работает молекулярный ротор

В митохондриях ротор АТФ-синтазы делает около 100 оборотов в секунду. Каждый полный оборот высвобождает три молекулы АТФ.

АТФ-синтаза: исследуйте, как работает молекулярный ротор
Модель загружается

На этом устройстве не получается показать 3D-модель. Шаги экскурсии ниже можно прочитать текстом.

1 / 17 Машина в мембранеУпрощённая АТФ-синтаза во внутренней мембране митохондрии. Головка сверху имеет ширину 10 нм; шкала над ней показывает масштаб. Формы сглажены, а не взяты из измеренных поверхностей. Нижняя панель открывает ещё пять сцен.

Тяните для поворота. Колесо или щипок меняют масштаб.

Обновлено Источники проверены
Реклама

Откуда в клетке берётся АТФ?

Как работает АТФ-синтаза? Протоны, возвращаясь через мембрану, вращают находящееся в ней кольцо, словно водяное колесо. Вращающийся стержень поочерёдно сжимает три каталитических центра головки, соединяющие АДФ и фосфат в АТФ. При обратном ходе тот же фермент расщепляет АТФ и перекачивает протоны, поэтому его также называют АТФазой.

Мышцы, нервы и ферменты копирования ДНК работают на одном топливе: аденозинтрифосфате. Отщепление третьего фосфата высвобождает энергию для работы; после его присоединения молекула вновь готова к использованию. Количества велики. По данным Нобелевского комитета, взрослый в покое за сутки обновляет примерно половину массы тела в АТФ, а при тяжёлой работе количество может приближаться к тонне. Запас клетки невелик, поэтому АТФ приходится восстанавливать так же быстро, как она расходуется.

Большую часть этой работы выполняет один фермент, АТФ-синтаза. Он находится во внутренней мембране митохондрий, мембранах бактерий и тилакоидах хлоропластов. Это также один из немногих белков, работающих вращением. Экспонат показывает упрощённый фермент в молекулярном масштабе, а затем ещё пять мест: складку митохондриальной мембраны с дыхательной цепью, освещённую мембрану хлоропласта, плывущую бактерию, лизосому с родственным насосом на АТФ и стекло опыта 1997 года, впервые показавшего вращение ротора. Нижняя панель переключает шесть сцен.

Плотина из мембраны

Энергия приходит не прямо из пищи. Дыхание передаёт её электроны по цепи мембранных белков. Цепь использует их энергию для перекачки протонов из матрикса, внутренней области митохондрии, в узкое пространство между двумя мембранами. Протоны накапливаются с одной стороны. Разности концентрации и электрического заряда вместе называют протондвижущей силой.

Peter Mitchell предложил эту хемиосмотическую идею в 1961 году и получил за неё Нобелевскую премию по химии в 1978 году. Клетка хранит энергию подобно плотине: как перепад уровня, стремящийся выровняться. АТФ-синтаза служит турбиной плотины. Через неё протоны возвращаются в матрикс и по пути вращают ротор.

В модели протоны обозначены красными шариками. Ползунки «Потенциал мембраны» и «Разность pH» задают силу напора. При изменении любого из них скопление под мембраной густеет или редеет, а ротор ускоряется, замедляется, стоит либо вращается обратно.

Складываем протондвижущую силу

Протон снаружи матрикса толкают внутрь две причины. Матрикс отрицательно заряжен относительно внешней среды и содержит меньше протонов, поэтому его pH выше. Mitchell объединил напор в одно число, протондвижущую силу Δp в милливольтах:

Δp = Δψ − 59 × ΔpH

Здесь Δψ равна потенциалу матрикса минус внешний потенциал, а ΔpH равна pH матрикса минус внешний pH. В работающей митохондрии Δψ отрицательна, ΔpH положительна, поэтому оба слагаемых делают Δp более отрицательной. Чем она отрицательнее, тем сильнее протоны стремятся внутрь. Коэффициент 59 переводит единицу pH в милливольты: это ln 10 × RT/F, то есть 59,16 мВ при 25 °C и 61,5 мВ при температуре тела 37 °C. Модель использует 59.

В начальном положении Δψ = −150 мВ и ΔpH = 0,80, поэтому Δp = −150 − 59 × 0,80 = −197 мВ. При каждом перемещении ползунка расчёт выводится на экран. Brand и Nicholls называют 150–180 мВ типичной величиной потенциала митохондрий в клетках. Здесь напор преимущественно электрический. В хлоропластах наоборот: при сильном свете большая часть энергии хранится как разность pH через мембрану тилакоида.

Для фермента важна энергия каждого протона. Один моль протонов при прохождении 197 мВ высвобождает F × Δp = 96 485 × 0,197 ≈ 19 кДж. Далее мы неоднократно возвращаемся к этому числу.

Fo, часть в мембране

У двух половин фермента исторические имена. Fo, от олигомицин-чувствительного фактора, находится в мембране. F1, фактор 1, выступает головкой в матрикс. Группа Efraim Racker выделила целый фермент из митохондрий в 1960 году.

Подвижная часть Fo представляет собой c-кольцо из одинаковых небольших белков. Каждая c-субъединица образует шпильку из двух спиралей. Посередине внешней спирали расположена кислая боковая цепь: в митохондриях это глутамат, показанный тёмным шариком. Рядом находится неподвижная a-субъединица. Она предоставляет протону два полуканала: один открывается наружу, другой в матрикс.

Заряженная боковая цепь не может быть обращена в маслянистую толщу мембраны. c может отвернуться от a лишь после присоединения протона к глутамату и нейтрализации заряда. Протон входит через первый полуканал, совершает круг на c и выходит через второй в матрикс. Снаружи протонов больше, поэтому с одной стороны они приходят чаще, и кольцо вращается в одном направлении. Pogoryelov с коллегами показали на кристаллических структурах c15, как участок остаётся закрытым к липиду и открывается только у a. Шарики на кольце обозначают путешествующие протоны.

F1, часть, синтезирующая АТФ

F1 представляет собой кольцо из шести субъединиц: три α и три β чередуются, словно дольки апельсина. Noji с коллегами описали его как бочонок радиусом около 5 нм, поэтому головка модели имеет ширину 10 нм. Шкала над ней показывает эти 10 нм.

Только β синтезирует АТФ. Посередине проходит центральный стержень, главным образом из γ. Его роторная часть имеет радиус всего около 1 нм. Основание закреплено на c-кольце и вращается вместе с ним. С другой стороны длинная периферическая ножка проходит от a к крышке над F1 и удерживает головку α3β3. Без неё головка вращалась бы вместе с осью и внутри ничего не менялось бы.

γ несимметрична. Боковой выступ при вращении нажимает по очереди на каждую β и меняет её форму. «Разрезать головку» убирает переднюю половину и позволяет следить за выступом.

Три центра работают по очереди

За десятилетия изотопных опытов Paul Boyer обнаружил необычное свойство. Соединить АДФ и фосфат внутри фермента можно почти без затрат энергии. Энергия нужна для достаточно прочного связывания этих веществ и, прежде всего, для освобождения готовой АТФ. Он предположил, что три β-центра по очереди проходят три состояния:

  1. Открытое (O): центр пуст или только что освобождает АТФ.
  2. Слабое связывание (L): АДФ и фосфат удерживаются слабо.
  3. Плотное связывание (T): центр закрывается, АДФ и фосфат превращаются в АТФ.

Поворот стержня на 120° переводит каждый центр в следующее состояние. Плотный открывается и отдаёт АТФ, слабый закрывается, открытый принимает новые АДФ и фосфат. Boyer назвал это механизмом изменения связывания и предположил вращение стержня. «Цвет β по состоянию» делает открытые β бледными, слабые жёлтыми, плотные красными; индикатор показывает те же состояния буквами. На шаге экскурсии с видом сверху можно проследить, как АДФ из белых и оранжевых шариков и отдельный фосфат становятся одной АТФ, прежде чем она улетит.

John Walker подошёл к ферменту через структуру. С Jan Pieter Abrahams и Andrew Leslie он определил кристаллическую структуру F1 сердца коровы при 2,8 Å в 1994 году. Три β действительно имели разные формы и связанные нуклеотиды, а в центре находилась асимметричная γ. Структура соответствовала механизму Boyer. Boyer и Walker разделили половину Нобелевской премии по химии 1997 года; вторую получил Jens Skou за натрий-калиевый насос, другой мембранный фермент на АТФ. По данным комитета, в покое один этот насос расходует около трети всей образующейся АТФ.

Где ротор останавливается

Почему он вообще идёт вперёд? Посчитаем энергию. Полный оборот переносит через мембрану n протонов, где n равно числу c-субъединиц, и даёт три АТФ. Каждая получает энергию n/3 протонов:

энергия на АТФ = (n/3) × F × Δp

Синтез АТФ в клетке тоже имеет определённую стоимость: потенциал фосфорилирования ΔGp. Он зависит от количества АТФ, АДФ и фосфата. Модель начинает с 45 кДж/моль, меняемых ползунком «Затраты на одну АТФ». Если поступление выше затрат, ротор синтезирует АТФ. Если ниже, АТФ побеждает и вращает его обратно. При равенстве ротор стоит:

Δp при остановке = 3 × ΔGp / (n × F)

Для коровы n = 8, и при 50 кДж/моль это 3 × 50 000 / (8 × 96 485) = 0,194 В, или 194 мВ. При 45 кДж/моль получается 175 мВ. График показывает модельную скорость против Δp для выбранного кольца и стоимости. Пунктир отмечает остановку, точка положение ползунков. Таблица под управлением делает тот же расчёт для c8–c15.

Отсюда два следствия. Большое кольцо останавливается при меньшем градиенте: c15 достаточно 93 мВ для тех же 45 кДж/моль, поскольку оно приносит 15 протонов вместо 8. И фермент обратим. Отдельного решения о направлении нет: его задаёт баланс двух энергий. Плавная кривая скорости через точку остановки выбрана для изображения, но сама точка вычислена.

Обратный ход

Понизьте градиент ниже точки остановки или повысьте стоимость АТФ, и индикатор покажет расход АТФ и перекачку протонов. АТФ связывается в головке, расщепляется, стержень поворачивается обратно шагами по 120°. c-кольцо выносит протоны из матрикса через мембрану. Счётчик расхода растёт.

В здоровой митохондрии это редко бывает: дыхательная цепь поддерживает высокий градиент. При его исчезновении, например без кислорода, обратный ход мог бы исчерпать клеточную АТФ за несколько минут. Для этого есть тормоз IF1. Cabezón с коллегами показали в 2003 году, что он вклинивается в границу α-β головки и касается γ. Выберите IF1 и уменьшите градиент: ротор остановится вместо обратного хода, а удерживающая спираль засветится.

Бактерии используют обратный режим. Без кислорода E. coli получает АТФ брожением и тратит её на обратный ход синтазы, сохраняя градиент для жгутиков и переноса питательных веществ. Это показывает сцена «Бактерия» при выключении кислорода. Некоторые родственные ферменты изначально устроены для обратной работы; они представлены в сцене V-АТФазы.

Лекарства и яды, останавливающие фермент

Поскольку от фермента зависит многое, ряд природных и искусственных веществ нацелен на него. В управлении доступны пять ингибиторов.

  • Олигомицин дал имя Fo. Symersky с коллегами определили его на дрожжевом c10 в 2012 году: снаружи между двумя c он закрывает протон-переносящий глутамат. Протон не может сесть, ротор стоит. Остатки кармана одинаковы у дрожжей и человека. В лабораториях им измеряют, сколько дыхания идёт на АТФ, а сколько на утечку.
  • DCCD (дициклогексилкарбодиимид) реагирует с тем же карбоксилатом и блокирует его необратимо. Pogoryelov с коллегами использовали модифицированное c15 для изучения открытия и закрытия участка. В модели глутаматные шарики зеленеют.
  • Бедаквилин лечит туберкулёз. Andries с коллегами нашли его в 2005 году как вещество, убивающее Mycobacterium tuberculosis; у устойчивых мутантов менялась протон-переносящая часть синтазы. Preiss с коллегами в 2015 году определили его на микобактериальном c9: препарат закрывает ионные участки и прекращает перенос. Они называют его первым за 40 лет одобренным препаратом против множественно устойчивого туберкулёза. Исследование 2024 года показало связывание и с ферментом человека на похожем месте c-кольца.
  • DNP (2,4-динитрофенол) не касается фермента. Он переносит протоны прямо через липид, убирает градиент и превращает пищу в тепло без АТФ. В 1933 году его продавали для похудения. Он вызывает опасный перегрев; обзор 2011 года насчитал 62 опубликованных смертельных случая. В модели протоны пересекают мембрану напрямую, ротор стоит. Бурый жир делает контролируемый вариант того же с UCP1, согревая животных.
  • IF1, собственный тормоз клетки, блокирует только обратное направление, как описано выше.

Кольца разных размеров

Размер c-кольца задаёт цену АТФ. При n субъединицах нужно n/3 протонов. Watt с коллегами нашли восемь c в митохондриях сердца коровы в 2010 году и отметили одинаковую последовательность почти у всех позвоночных. Вероятно, все они платят 2,7 протона на АТФ. Грибы, бактерии и хлоропласты используют 9–15. Таблица под управлением содержит 13 колец и соответствующие структуры:

Организм Кольцо H⁺ на АТФ Структура
Митохондрии сердца коровы c8 2,67 PDB 2XND
Mycobacterium phlei c9 3,00 PDB 4V1F
Дрожжи c10 3,33 PDB 1QO1
Escherichia coli c10 3,33 PDB 5T4O
Ilyobacter tartaricus (Na⁺) c11 3,67 PDB 1YCE
Bacillus pseudofirmus OF4 c13 4,33 PDB 2X2В
Хлоропласт шпината c14 4,67 PDB 2W5Дж
Spirulina platensis c15 5,00 PDB 2WIE

Почему не использовать везде минимум? Малое кольцо дёшево синтезирует АТФ, но требует высокого градиента. Большое работает при слабом напоре, но тратит больше протонов. Bacillus pseudofirmus OF4 живёт в щелочной воде, где внешних протонов мало; его c13 делит протон со связанной водой. Ilyobacter tartaricus переносит вместо протонов натрий. Vollmar с коллегами нашли у шпинатного c14 расстояние между ионными участками 10,6–10,8 Å, такое же, как у Ilyobacter c11. Кольцо с большим числом субъединиц просто шире.

Меняйте «Размер c-кольца» в сцене фермента и следите за совместным изменением остановки и цены АТФ. Где есть измеренный организм, ползунок называет его; c12 в таблице нет.

Реклама

Внутри митохондрии

Откройте сцену «Митохондрия». Внутренняя мембрана образует кристы; одна складка показана в разрезе с открытым передним краем. Снаружи складки матрикс. Внутри узкое пространство, связанное с межмембранным; там собираются перекачанные протоны.

Четыре комплекса сбоку передают электроны пищи кислороду:

  1. Комплекс I забирает два электрона у NADH и передаёт убихинону, небольшому подвижному переносчику в мембране. Это один из крупнейших ферментов клетки. Zhu, Vinothkumar и Hirst в 2016 году разместили все 45 субъединиц фермента коровы. Он качает 4 протона на два электрона.
  2. Комплекс II передаёт электроны сукцината тому же пулу убихинона без перекачки протонов. Он также входит в цикл лимонной кислоты.
  3. Комплекс III, цитохром bc1, передаёт электроны убихинола цитохрому c и высвобождает снаружи 4 протона на два электрона.
  4. Комплекс IV, цитохром-c-оксидаза, отдаёт их кислороду, который становится водой, и качает ещё 2 протона.

Два электрона NADH перемещают 10 протонов, сукцината только 6. Watt с коллегами рассчитали выход по этим числам. При c8 на АТФ требуется 8/3 = 2,67 протона, а вывод из митохондрии стоит ещё один: обмен АТФ на АДФ и ввоз фосфата вместе используют эквивалент одного протона. Итого 3,67 на выведенную АТФ:

  • NADH: 10 / 3,67 = 2,7 АТФ на атом кислорода
  • сукцинат: 6 / 3,67 = 1,6 АТФ на атом кислорода

Это отношения P/O. Обзор измерений Hinkle даёт около 2,5 и 1,5, чуть меньше из-за утечки протонов через мембрану мимо фермента. Индикатор показывает расчёт и отношение, подсчитанное в работающей модели. Смена топлива на сукцинат понижает оба.

АТФ-синтазы здесь стоят парами на гребне. Davies с коллегами нашли криоэлектронной томографией дрожжевых митохондрий V-образные пары с углом 86° в рядах вдоль крист. Штаммы без пар имеют лишь пузыревидные кристы либо вовсе их лишены. Атомная модель парной области Fo от Guo, Bueler и Rubinstein показывает изгиб мембраны. Здесь вдоль гребня четыре V-пары, каждый фермент вращает свой ротор.

Сцена содержит небольшой протонный контур. При низком градиенте цепь качает быстрее, при высоком медленнее: это дыхательный контроль. Синтаза и небольшая утечка возвращают протоны. Попробуйте ингибиторы. Олигомицин останавливает синтазу, градиент растёт, дыхание почти прекращается. DNP открывает утечку, градиент падает, дыхание ускоряется, топливо становится теплом. Тогда индикатор показывает обратное вращение на АТФ, как в разобщённых митохондриях без торможения IF1. Выключение кислорода останавливает всю цепь.

Внутри хлоропласта

Сцена «Хлоропласт» показывает участок мембраны тилакоида. Сверху строма, снизу просвет тилакоида. Энергия приходит от света, а не пищи, но фермент того же типа, головкой в строму.

  1. Фотосистема II поглощает свет и извлекает электроны из воды. Структура Umena с коллегами при 1,9 Å показывает кластер Mn₄CaO₅: две воды дают одну O₂, четыре электрона и четыре протона в просвете.
  2. Пластохинон переносит электроны через мембрану к цитохрому b6f, который добавляет протоны в просвет.
  3. Пластоцианин, небольшой медный белок просвета, несёт их к фотосистеме I. Второй фотон поднимает электроны к ферредоксину и NADP⁺; в строме образуется NADPH.

Kramer и Evans насчитывают в линейном потоке 12 протонов в просвет и 2 NADPH на O₂. Кольцо c14 требует 14/3 = 4,67 протона на АТФ; 12 протонов дают 12 × 3 / 14 = 2,57 АТФ. Это 1,29 АТФ на NADPH, но цикл Кальвина тратит 3 АТФ на 2 NADPH, то есть 1,5. Недостаток восполняют другие пути, например циклический поток вокруг фотосистемы I, качающий протоны без NADPH. Индикатор показывает оба отношения и пересчитывает при смене кольца.

Просвет закисляется. В живых листьях Arabidopsis Takizawa с коллегами оценили около pH 7,5 при слабом свете и 5,7 при сильном свете и малом CO₂. График отслеживает pH при смене освещения. В модели строма фиксирована на pH 8, а 70 % градиента хранится как ΔpH. Оба значения выбраны для модели.

Уменьшите свет до нуля. Вскоре индикатор сообщит о блокировке переключателем γ. Структура целого фермента из 26 субъединиц, определённая Hahn с коллегами в 2018 году, показывает β-шпильку в γ, действующую как окислительно-восстановительный переключатель в темноте.

Фермент хлоропласта участвовал и в классическом опыте. В 1966 году André Jagendorf и Ernest Uribe выдержали тилакоиды шпината в кислоте, перенесли в щелочной буфер с АДФ и фосфатом и получили АТФ в темноте. Одной разности pH было достаточно, как требовала идея Mitchell.

Бактерия и её жгутики

У бактерий нет митохондрий. Дыхательная цепь находится в самой клеточной мембране и качает протоны в периплазму, узкий промежуток между внутренней и внешней мембранами. Сцена показывает E. coli длиной около 2 мкм справа сзади, а впереди участок её внутренней мембраны, изображённый примерно в 50 раз крупнее клетки.

Две машины используют один градиент. Первая, АТФ-синтаза: группа Fillingame в 2001 году показала предпочтение c10 у E. coli. Крио-ЭМ Sobti с коллегами показывает десять c и ε, способную вытянуться и заблокировать фермент. Вторая, жгутиковый мотор: Howard Berg описывает ширину около 45 нм и около 20 типов деталей. Здесь он в одном масштабе с синтазой, более чем вчетверо шире. Протоны через кольцо статорных элементов вращают ротор. Meister, Lowe и Berg показали пропорциональность протонного потока скорости.

В отличие от синтазы мотор меняет направление по команде. Белок CheY с фосфатом связывается с C-кольцом внизу и переключает вращение на движение по часовой стрелке. У E. coli против часовой нити собираются в пучок и клетка плывёт; по часовой пучок распадается, клетка кувыркается и отправляется в новом направлении. Включите «Жгутики по часовой»: розовые шарики CheY связываются, нити расходятся, клетка кувыркается.

Выключите кислород. Дыхание останавливается, градиент падает ниже остановки c10, и АТФ-синтаза идёт обратно на АТФ брожения, выкачивая протоны для мотора. Градиент устанавливается чуть ниже, клетка продолжает плыть медленнее.

Насосы для обратной работы

Некоторые родственники синтазы обычно тратят АТФ. Вакуолярные, или V-АТФазы, качают протоны в клеточные отсеки для подкисления. Пищеварительные мешочки лизосомы поддерживаются при pH 4,5–5, где работают их ферменты. Обзор Mindell объясняет, что насос не справится один: вход протонов накапливает заряд, поэтому должен двигаться другой ион. Обменник хлорида и протонов ClC-7 участвует в этом и показан рядом.

Сцена V-АТФазы содержит два насоса на мембране и маленькую целую лизосому сзади. Её цвет следует внутреннему pH. Строение знакомо: головка из трёх A и трёх B, аналогов β и α, центральный ротор и мембранное кольцо. Видны и отличия. Zhao, Benlekbir и Rubinstein показали крио-ЭМ дрожжей три периферические ножки вместо одной и несколько видов протеолипидов в кольце. Позже Mazhab-Jafari с коллегами определили их как c8, c′ и c″. Murata с коллегами определили десятисубъединичный ротор родственного натриевого насоса Enterococcus hirae.

У V-АТФазы есть переключатель, которого нет у F-типа: половины могут разделяться. При голодании по глюкозе дрожжевая V1 отделяется от Vo, перекачка прекращается. Именно так Mazhab-Jafari с коллегами получили свободную Vo для атомной модели. «Голод: V1 отделяется» поднимает головки, а просвет медленно возвращается к нейтральному pH.

Увидеть вращение

До 1997 года вращение оставалось выводом. Hiroyuki Noji, Ryohei Yasuda, Masasuke Yoshida и Kazuhiko Kinosita закрепили F1 через β на стекле вверх ногами, прикрепили к γ флуоресцентную актиновую нить и добавили АТФ. В микроскоп нить сделала более 100 оборотов, всегда против часовой стрелки со стороны мембраны. Сам по себе F1 не синтезирует АТФ; получив её, расщепляет и вращает стержень противоположно синтезу.

«Опыт вращения» воспроизводит это. Главный вид соответствует микроскопу: стекло и зелёная нить, вращающаяся вокруг конца. Боковая картинка показывает сам F1 примерно в 50-кратном увеличении: γ вращается в закреплённой головке.

Нить не движется с заранее заданной скоростью. Мотор создаёт около 40 пН·нм момента, вода сопротивляется нити. Для стержня, вращающегося вокруг конца, сопротивление растёт как куб длины:

сопротивление = (4π/3) η L³ / (ln(L / 2r) − 0,447)

η обозначает вязкость воды, r радиус нити. При 1 мкм получается около 6,3 оборота в секунду, при 2 мкм менее одного. «Длина актина» запускает пересчёт; «сопротивление метки» означает, что скорость задаёт нить, не фермент.

Позднее использовали меньшие метки. Yasuda с коллегами в 1998 году нашли при низкой АТФ отдельные шаги по 120°, по одному на АТФ. Работа за шаг оставалась почти одинаковой при разных нагрузках, близкой к свободной энергии гидролиза одной АТФ. С лёгким золотым шариком 40 нм, почти не тормозящим мотор, в 2001 году они разделили шаг на примерно 90° и 30° и измерили около 130 оборотов в секунду при избытке АТФ. Sakaki с коллегами получили тот же момент около 40 пН·нм при 2 mM, 60 nM и 2 nM АТФ и константу связывания 2 × 10⁷ на молярную концентрацию в секунду.

Модель использует эти числа. АТФ связывается после случайного ожидания со средним 1 / (kon × [ATP]); затем момент поворачивает метку на 120° так быстро, как позволяет сопротивление. При концентрации около 0,2 µM ожидания становятся длиннее поворотов: нить скачет, график становится ступенчатым. С золотым шариком шаги резкие, потому что он почти не тормозит. Ограничением становится связывание АТФ, воспроизведение замедляется для наблюдения.

Последний шаг обратил опыт. В 2004 году Itoh с коллегами прикрепили магнитный шарик к γ и вращали его обратно электромагнитами. В растворе появилась АТФ. Rondelez с коллегами заключили одиночные F1 в камеры объёмом несколько фемтолитров и нашли до 77 % продуктивных принудительных оборотов при наличии малой ε. Выберите магнитный шарик и обратное вращение магнитами: катушки загораются по очереди, шарик идёт по часовой, каждые 120° добавляют одну АТФ в счётчик.

Проверяем числа

Каждая c переносит один протон за оборот, каждый оборот даёт три АТФ. Протоны на АТФ равны числу c, делённому на 3: у коровы 8 ÷ 3 = 2,67, у дрожжей и E. coli 10 ÷ 3 = 3,33, у шпината 14 ÷ 3 = 4,67, у Spirulina platensis 15 ÷ 3 = 5,00.

Watt с коллегами указывают около 100 оборотов в секунду в митохондриях. При 3 АТФ за оборот это около 300 АТФ в секунду от фермента и при c8 около 800 протонов через него. Модель примерно в 100 раз медленнее, до 1,2 оборота в секунду, чтобы можно было следить за шариками.

Группа Noji измерила момент около 40 пН·нм. Шаг 120° равен 2π/3 радиана, поэтому работа около 40 × 2,09 ≈ 84 пН·нм, или 8,4 × 10⁻²⁰ J. АТФ при 50 кДж/моль содержит 50 000 / (6,022 × 10²³) ≈ 8,3 × 10⁻²⁰ J, или 83 пН·нм. Значения почти одинаковы: мотор превращает почти всю химическую энергию в работу, как сообщили Yasuda с коллегами. Индикатор опыта показывает оба; энергия АТФ следует ползунку затрат.

Остановка получается обратным расчётом. При 50 кДж/моль кольцо c8 требует (8/3) × 96 485 × Δp = 50 000 Дж, откуда Δp = 0,194 В. c14 уравновешивается при 0,111 В, c10 при 0,155 В.

АТФ за сутки

Сколько АТФ человек производит за день? Калькулятор лаборатории под управлением начинает с кислорода. Один MET, используемая в нагрузочных тестах величина покоя, равен 3,5 мл кислорода на килограмм массы в минуту. Для взрослого 70 кг это около 245 мл в минуту. За сутки 245 × 1440 = 352 800 мл, или 352,8 л. При 22,414 л на моль, объёме газа при 0 °C и 1 атмосфере, принятом для таких данных, получается около 15,7 моль O₂, или 31,5 моль атомов кислорода.

При P/O 2,5 это 31,5 × 2,5 ≈ 79 моль АТФ. Молярная масса АТФ 507,18 г, поэтому 79 моль весят около 40 кг, немного больше половины тела, в согласии с оценкой комитета. При тяжёлой работе потребление кислорода растёт в несколько раз, вместе с ним растёт суточная АТФ. Обратный расчёт показывает: при P/O 2,5 человеку 70 кг нужно около 430 мл кислорода в минуту, чтобы суточная АТФ весила как тело.

Сколько ферментов нужно? 79 моль составляют 4,7 × 10²⁵ молекул. Фермент с производительностью 300 в секунду даёт 2,6 × 10⁷ за сутки, значит, нужно около 1,8 × 10¹⁸ постоянно вращающихся ферментов. Это оборот вещества: одновременно АТФ в теле мало, она многократно обновляется.

Когда фермент повреждён

Неподвижная a, через которую проходят протоны, кодируется MT-ATP6 в собственной ДНК митохондрии. MedlinePlus Genetics Национальной медицинской библиотеки США перечисляет болезни, вызванные изменениями этого гена. Около 10 % людей с синдромом Лея, прогрессирующим заболеванием мозга, обычно начинающимся в младенчестве или раннем детстве, имеют изменение MT-ATP6. Чаще всего это замена одной буквы T8993G. Те же изменения могут вызвать более лёгкий NARP: нейропатию, атаксию и пигментный ретинит. В клетке много митохондрий, и тяжесть обычно связана с долей изменённых: типично 70–90 % при NARP и более 90 % при синдроме Лея.

Lai с коллегами в структуре человека 2023 года разместили болезнетворные мутации и нашли большинство на контактах субъединиц, где они могут ослабить всю машину. Экспонат не является медицинским справочником; вопросы здоровья следует обсуждать с врачом.

Что модель опускает

  • Формы представляют сглаженные объёмы на местах субъединиц, а не измеренные белковые поверхности из указанных записей PDB.
  • Скорость задана модельной плавной кривой через вычисленную остановку. У настоящих ферментов связь силы и скорости сложнее, ротор примерно в 100 раз быстрее.
  • При синтезе модель движется малыми шагами на каждый протон. Обратно показывает измеренные на F1 шаги 120°, но не подшаги 90° и 30°; они есть только в опыте с золотым шариком.
  • Murphy с коллегами нашли, что головка F1 идёт с ротором первые примерно 30° каждого шага 120° на гибком шарнире. Модель удерживает головку.
  • Малые субъединицы у основания стержня нарисованы единым целым; копии синтазы в других сценах имеют одну упрощённую форму.
  • Скорости протонных контуров митохондрии, хлоропласта и бактерии и кривая pH V-АТФазы условны. Стехиометрия, 10 и 6 протонов, 12 на O₂, n/3 на АТФ, взята из источников.

Краткая история

  • 1929: Karl Lohmann открывает АТФ. Alexander Todd синтезирует её в 1948 году.
  • 1939–1941: Fritz Lipmann показывает перенос энергии АТФ по клетке.
  • 1957: Jens Skou описывает натрий-калиевый насос.
  • 1960: Группа Efraim Racker выделяет фермент из митохондрий.
  • 1961: Peter Mitchell предлагает хемиосмотическую идею; Нобелевская премия 1978 года.
  • 1966: Jagendorf и Uribe получают АТФ в темноте с помощью кислотной ванны.
  • 1974: Racker и Stoeckenius получают АТФ от света в искусственных пузырьках.
  • 1994: Abrahams, Leslie, Lutter и Walker определяют структуру F1.
  • 1997: Noji с коллегами видят вращение; Boyer, Walker и Skou делят Нобелевскую премию по химии.
  • 2001: Yasuda с коллегами различают подшаги 90° и 30°.
  • 2004: Itoh с коллегами получают АТФ, вращая F1 магнитами.
  • 2010: Watt с коллегами находят c8 у млекопитающих.
  • 2015–2023: Крио-ЭМ показывает целые ферменты коровы, дрожжей, бактерий, хлоропластов и человека в состояниях вращения.

Вопросы

Зачем АТФ-синтазе вообще вращаться?

Три β-центра должны менять форму в фиксированном порядке. Энергию дают протоны в мембране в нескольких нанометрах от них. Вращающаяся ось переносит её и последовательно приводит центры в действие.

Сколько протонов нужно на одну АТФ?

Число c-субъединиц делят на 3. При 8, как у коровы и, вероятно, человека, это около 2,7. Кольца 9–15 у грибов, бактерий и хлоропластов требуют 3–5. Вывод из митохондрии стоит ещё около одного протона.

Что такое протондвижущая сила?

Напор на протоны через мембрану в милливольтах: Δp = Δψ − 59 × ΔpH. Он объединяет электрическую разность и переведённую в милливольты разность pH. В митохондриях это около 200 мВ, в основном электрических.

Почему 59 милливольт на единицу pH?

Десятикратная разность концентрации протонов, одна единица pH, хранит столько же энергии, сколько напряжение ln 10 × RT/F. При 25 °C это 59,16 мВ, при 37 °C 61,5 мВ.

Может ли АТФ-синтаза идти обратно?

Да. При слабом градиенте или избытке АТФ она приводит F1, стержень идёт обратно, c-кольцо качает протоны. Так работала изолированная F1 в опыте 1997 года. Митохондрии тормозят её IF1, бактерии поддерживают ею градиент без кислорода.

Где ротор останавливается?

Когда энергия n/3 протонов равна затратам на АТФ: Δp = 3 × ΔGp / (n × F). Для c8 при 50 кДж/моль это 194 мВ.

Почему размеры колец различаются?

Малое кольцо тратит меньше протонов, но требует сильного градиента. Большое работает при слабом и тратит больше. Размер, по-видимому, соответствует поддерживаемому градиенту: c8 у позвоночных, c14 в хлоропластах, c13 у щелочелюбивой бактерии.

Насколько велика АТФ-синтаза?

Ширина головки F1 около 10 нм, γ внутри около 2 нм. Жгутиковый мотор имеет ширину около 45 нм. В модели c-кольцо, a и периферическая ножка подогнаны к головке, но их размеры оценочные.

Как быстро она вращается?

По Watt с коллегами, в митохондриях около 100 оборотов в секунду. F1 сама по себе при избытке АТФ достигала около 130 в опытах Yasuda 2001 года.

Сколько АТФ тело производит за сутки?

По данным Нобелевского комитета, в покое около половины массы тела. Потребление кислорода 245 мл в минуту при P/O 2,5 даёт около 79 моль, или 40 кг, для взрослого 70 кг.

Что делает DNP и почему он опасен?

Он возвращает протоны мимо синтазы, превращая энергию пищи в тепло. Его продавали для похудения в 1930-х годах. Он вызывает угрожающий жизни перегрев; обзор 2011 года насчитал 62 опубликованных смертельных случая.

Как туберкулёзное лекарство действует на синтазу?

Бедаквилин связывается с c-кольцом микобактериального фермента и закрывает ионные участки. Кольцо перестаёт переносить протоны, фермент стоит.

Что такое V-АТФаза?

Родственный фермент, устроенный для работы на АТФ. Он подкисляет лизосомы и другие отсеки, закачивая протоны. У него три периферические ножки, а половины могут разойтись для выключения.

Кто получил Нобелевскую премию за АТФ-синтазу?

Paul Boyer и John Walker разделили половину премии по химии 1997 года: первый за механизм изменения связывания, второй за подтвердившую его структуру. Jens Skou получил вторую половину за натрий-калиевый насос. Peter Mitchell получил премию 1978 года за хемиосмотическую теорию.

Связан ли жгутиковый мотор с АТФ-синтазой?

Оба представляют вращательные моторы на потоке ионов через мембрану, но состоят из разных белков. Жгутиковый мотор значительно крупнее, около 45 нм, и способен менять направление.

Термины

  • АТФ: аденозинтрифосфат, переносчик химической энергии клетки.
  • Протондвижущая сила (Δp): напор на протоны через мембрану, Δψ − 59 × ΔpH, в милливольтах.
  • Мембранный потенциал (Δψ): электрическая разность через мембрану.
  • Потенциал фосфорилирования (ΔGp): затраты энергии на АТФ в условиях клетки.
  • Fo: мембранная часть из c-кольца, a и основания периферической ножки.
  • F1: синтезирующая часть из трёх α и трёх β вокруг центрального стержня.
  • c-кольцо: кольцо c-субъединиц, вращаемое проходящими протонами.
  • Центральный стержень: γ и основание, закреплённые на c-кольце и вращающиеся внутри F1.
  • Периферическая ножка: рычаг, удерживающий F1 против вращающегося стержня.
  • Механизм изменения связывания: модель Boyer, в которой три β поочерёдно открываются, связывают слабо и плотно.
  • Отношение P/O: АТФ на атом кислорода, использованный дыханием.
  • Криста: складка внутренней мембраны митохондрии.
  • Тилакоид: мембранный мешочек хлоропласта, где идут световые реакции.
  • Разобщитель: молекула, возвращающая протоны через мембрану без синтеза АТФ.
  • V-АТФаза: вращательный протонный насос на АТФ, родственный синтазе.
  • CheY: сигнальный белок, который с фосфатом переключает жгутик на вращение по часовой стрелке.

Источники

  • NobelPrize.org, Press release: The Nobel Prize in Chemistry 1997 (half body weight of ATP per day, almost a ton in hard work, Lohmann 1929, Lipmann 1939 to 1941, Todd 1948, Racker 1960, Fo and F1 names, Mitchell 1961 and 1978, binding change mechanism, Na⁺,K⁺-ATPase uses a third of ATP at rest). https://www.nobelprize.org/prizes/chemistry/1997/press-release/ (checked 18 October 2026)
  • NobelPrize.org, The Nobel Prize in Chemistry 1978, summary. https://www.nobelprize.org/prizes/chemistry/1978/summary/ (checked 18 October 2026)
  • Mitchell P. Coupling of phosphorylation to electron and hydrogen transfer by a chemi-osmotic type of mechanism. Nature 191, 144 (1961). https://doi.org/10.1038/191144a0 (checked 18 October 2026)
  • Boyer PD. The ATP synthase, a splendid molecular machine. Annual Review of Biochemistry 66, 717 (1997). https://doi.org/10.1146/annurev.biochem.66.1.717 (checked 18 October 2026)
  • Abrahams JP, Leslie AGW, Lutter R, Walker JE. Structure at 2.8 Å resolution of F1-ATPase from bovine heart mitochondria. Nature 370, 621 (1994), PDB 1BMF. https://doi.org/10.1038/370621a0 (checked 18 October 2026)
  • Noji H, Yasuda R, Yoshida M, Kinosita K. Direct observation of the rotation of F1-ATPase. Nature 386, 299 (1997) (rotor radius about 1 nm, barrel radius about 5 nm, anticlockwise from the membrane side). https://doi.org/10.1038/386299a0 (checked 18 October 2026)
  • Yasuda R, Noji H, Kinosita K, Yoshida M. F1-ATPase is a highly efficient molecular motor that rotates with discrete 120° steps. Cell 93, 1117 (1998) (work per step close to the free energy of one ATP). https://doi.org/10.1016/S0092-8674(00)81456-7 (checked 18 October 2026)
  • Yasuda R, Noji H, Yoshida M, Kinosita K, Itoh H. Resolution of distinct rotational substeps by submillisecond kinetic analysis of F1-ATPase. Nature 410, 898 (2001) (90° and 30° substeps, about 130 revolutions per second). https://doi.org/10.1038/35073513 (checked 18 October 2026)
  • Sakaki N et al. One rotary mechanism for F1-ATPase over ATP concentrations from millimolar down to nanomolar. Biophysical Journal 88, 2047 (2005) (torque about 40 pN·nm, binding rate 2 × 10⁷ per M per s). https://doi.org/10.1529/biophysj.104.054668 (checked 18 October 2026)
  • Itoh H et al. Mechanically driven ATP synthesis by F1-ATPase. Nature 427, 465 (2004). https://doi.org/10.1038/nature02212 (checked 18 October 2026)
  • Rondelez Y et al. Highly coupled ATP synthesis by F1-ATPase single molecules. Nature 433, 773 (2005) (up to 77 %). https://doi.org/10.1038/nature03277 (checked 18 October 2026)
  • Watt IN, Montgomery MG, Runswick MJ, Leslie AGW, Walker JE. Bioenergetic cost of making an adenosine triphosphate molecule in animal mitochondria. PNAS 107, 16823 (2010), PDB 2XND (c8 ring, 2.7 protons per ATP, about 100 turns per second, 10 and 6 protons per two electrons, 3.7 protons per ATP delivered, P/O 2.7 and 1.6). https://doi.org/10.1073/pnas.1011099107 (checked 18 October 2026)
  • Hinkle PC. P/O ratios of mitochondrial oxidative phosphorylation. Biochimica et Biophysica Acta 1706, 1 (2005). https://doi.org/10.1016/j.bbabio.2004.09.004 (checked 18 October 2026)
  • Brand MD, Nicholls DG. Assessing mitochondrial dysfunction in cells. Biochemical Journal 435, 297 (2011) (membrane potential 150 to 180 mV, oligomycin and proton leak). https://doi.org/10.1042/BJ20110162 (checked 18 October 2026)
  • Stock D, Leslie AGW, Walker JE. Molecular architecture of the rotary motor in ATP synthase. Science 286, 1700 (1999), PDB 1QO1. https://doi.org/10.1126/science.286.5445.1700 (checked 18 October 2026)
  • Seelert H et al. Proton-powered turbine of a plant motor. Nature 405, 418 (2000). https://doi.org/10.1038/35013148 (checked 18 October 2026)
  • Vollmar M et al. Structure of the c14 rotor ring of the proton translocating chloroplast ATP synthase. Journal of Biological Chemistry 284, 18228 (2009), PDB 2W5J. https://doi.org/10.1074/jbc.M109.006916 (checked 18 October 2026)
  • Pogoryelov D et al. The c15 ring of the Spirulina platensis F-ATP synthase. EMBO Reports 6, 1040 (2005). https://doi.org/10.1038/sj.embor.7400517 (checked 18 October 2026)
  • Pogoryelov D et al. High-resolution structure of the rotor ring of a proton-dependent ATP synthase. Nature Structural & Molecular Biology 16, 1068 (2009), PDB 2WIE. https://doi.org/10.1038/nsmb.1678 (checked 18 October 2026)
  • Pogoryelov D et al. Microscopic rotary mechanism of ion translocation in the Fo complex of ATP synthases. Nature Chemical Biology 6, 891 (2010), PDB 2XQU. https://doi.org/10.1038/nchembio.457 (checked 18 October 2026)
  • Meier T et al. Structure of the rotor ring of F-type Na⁺-ATPase from Ilyobacter tartaricus. Science 308, 659 (2005), PDB 1YCE. https://doi.org/10.1126/science.1111199 (checked 18 October 2026)
  • Preiss L et al. A new type of proton coordination in an F1Fo-ATP synthase rotor ring. PLoS Biology 8, e1000443 (2010), PDB 2X2V. https://doi.org/10.1371/journal.pbio.1000443 (checked 18 October 2026)
  • Jiang W, Hermolin J, Fillingame RH. The preferred stoichiometry of c subunits in the rotary motor sector of Escherichia coli ATP synthase is 10. PNAS 98, 4966 (2001). https://doi.org/10.1073/pnas.081424898 (checked 18 October 2026)
  • Sobti M et al. Cryo-EM structures of the autoinhibited E. coli ATP synthase in three rotational states. eLife 5, e21598 (2016), PDB 5T4O. https://doi.org/10.7554/eLife.21598 (checked 18 October 2026)
  • Symersky J et al. Oligomycin frames a common drug-binding site in the ATP synthase. PNAS 109, 13961 (2012), PDB 4F4S. https://doi.org/10.1073/pnas.1207912109 (checked 18 October 2026)
  • Andries K et al. A diarylquinoline drug active on the ATP synthase of Mycobacterium tuberculosis. Science 307, 223 (2005). https://doi.org/10.1126/science.1106753 (checked 18 October 2026)
  • Preiss L et al. Structure of the mycobacterial ATP synthase Fo rotor ring in complex with the anti-TB drug bedaquiline. Science Advances 1, e1500106 (2015), PDB 4V1F. https://doi.org/10.1126/sciadv.1500106 (checked 18 October 2026)
  • Zhang Y et al. Inhibition of M. tuberculosis and human ATP synthase by BDQ and TBAJ-587. Nature 631, 409 (2024), PDB 8KHF. https://doi.org/10.1038/s41586-024-07605-8 (checked 18 October 2026)
  • Cabezón E et al. The structure of bovine F1-ATPase in complex with its regulatory protein IF1. Nature Structural Biology 10, 744 (2003), PDB 1OHH. https://doi.org/10.1038/nsb966 (checked 18 October 2026)
  • Grundlingh J et al. 2,4-Dinitrophenol (DNP): a weight loss agent with significant acute toxicity and risk of death. Journal of Medical Toxicology 7, 205 (2011). https://doi.org/10.1007/s13181-011-0162-6 (checked 18 October 2026)
  • Cannon B, Nedergaard J. Brown adipose tissue: function and physiological significance. Physiological Reviews 84, 277 (2004). https://doi.org/10.1152/physrev.00015.2003 (checked 18 October 2026)
  • Zhu J, Vinothkumar KR, Hirst J. Structure of mammalian respiratory complex I. Nature 536, 354 (2016), PDB 5LDW. https://doi.org/10.1038/nature19095 (checked 18 October 2026)
  • Davies KM et al. Structure of the yeast F1Fo-ATP synthase dimer and its role in shaping the mitochondrial cristae. PNAS 109, 13602 (2012). https://doi.org/10.1073/pnas.1204593109 (checked 18 October 2026)
  • Guo H, Bueler SA, Rubinstein JL. Atomic model for the dimeric FO region of mitochondrial ATP synthase. Science 358, 936 (2017), PDB 6B2Z. https://doi.org/10.1126/science.aao4815 (checked 18 October 2026)
  • Murphy BJ et al. Rotary substates of mitochondrial ATP synthase reveal the basis of flexible F1-Fo coupling. Science 364, eaaw9128 (2019), PDB 6RD4. https://doi.org/10.1126/science.aaw9128 (checked 18 October 2026)
  • Umena Y et al. Crystal structure of oxygen-evolving photosystem II at a resolution of 1.9 Å. Nature 473, 55 (2011), PDB 3WU2. https://doi.org/10.1038/nature09913 (checked 18 October 2026)
  • Kramer DM, Evans JR. The importance of energy balance in improving photosynthetic productivity. Plant Physiology 155, 70 (2011) (12 protons per O₂, 2.57 ATP, 1.29 ATP per NADPH). https://doi.org/10.1104/pp.110.166652 (checked 18 October 2026)
  • Takizawa K et al. The thylakoid proton motive force in vivo. Biochimica et Biophysica Acta 1767, 1233 (2007) (lumen pH about 7.5 to about 5.7). https://doi.org/10.1016/j.bbabio.2007.07.006 (checked 18 October 2026)
  • Hahn A et al. Structure, mechanism, and regulation of the chloroplast ATP synthase. Science 360, eaat4318 (2018), PDB 6FKF (26 subunits, redox switch in γ). https://doi.org/10.1126/science.aat4318 (checked 18 October 2026)
  • Jagendorf AT, Uribe E. ATP formation caused by acid-base transition of spinach chloroplasts. PNAS 55, 170 (1966). https://doi.org/10.1073/pnas.55.1.170 (checked 18 October 2026)
  • Racker E, Stoeckenius W. Reconstitution of purple membrane vesicles catalyzing light-driven proton uptake and adenosine triphosphate formation. Journal of Biological Chemistry 249, 662 (1974). https://doi.org/10.1016/S0021-9258(19)43080-9 (checked 18 October 2026)
  • Mindell JA. Lysosomal acidification mechanisms. Annual Review of Physiology 74, 69 (2012) (pH 4.5 to 5, counter-ion, ClC-7). https://doi.org/10.1146/annurev-physiol-012110-142317 (checked 18 October 2026)
  • Zhao J, Benlekbir S, Rubinstein JL. Electron cryomicroscopy observation of rotational states in a eukaryotic V-ATPase. Nature 521, 241 (2015), PDB 3J9T. https://doi.org/10.1038/nature14365 (checked 18 October 2026)
  • Mazhab-Jafari MT et al. Atomic model for the membrane-embedded VO motor of a eukaryotic V-ATPase. Nature 539, 118 (2016), PDB 5TJ5. https://doi.org/10.1038/nature19828 (checked 18 October 2026)
  • Murata T et al. Structure of the rotor of the V-type Na⁺-ATPase from Enterococcus hirae. Science 308, 654 (2005), PDB 2BL2. https://doi.org/10.1126/science.1110064 (checked 18 October 2026)
  • Berg HC. The rotary motor of bacterial flagella. Annual Review of Biochemistry 72, 19 (2003) (about 45 nm, about 20 kinds of parts). https://doi.org/10.1146/annurev.biochem.72.121801.161737 (checked 18 October 2026)
  • Meister M, Lowe G, Berg HC. The proton flux through the bacterial flagellar motor. Cell 49, 643 (1987). https://doi.org/10.1016/0092-8674(87)90540-X (checked 18 October 2026)
  • Minamino T, Kinoshita M, Namba K. Directional switching mechanism of the bacterial flagellar motor. Computational and Structural Biotechnology Journal 17, 1075 (2019) (CheY-P binds the C ring, CCW to CW, tumbling). https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC6700473/ (checked 16 October 2026)
  • Lai Y et al. Structure of the human ATP synthase. Molecular Cell 83, 2137 (2023), PDB 8H9S. https://doi.org/10.1016/j.molcel.2023.04.029 (checked 18 October 2026)
  • MedlinePlus Genetics, U.S. National Library of Medicine. MT-ATP6 gene (Leigh syndrome about 10 %, T8993G, NARP, 70 to 90 % and over 90 %). https://medlineplus.gov/genetics/gene/mt-atp6/ (checked 18 October 2026)
  • Jetté M, Sidney K, Blümchen G. Metabolic equivalents (METS) in exercise testing, exercise prescription, and evaluation of functional capacity. Clinical Cardiology 13, 555 (1990) (one MET = 3.5 mL O₂ per kg per minute). https://doi.org/10.1002/clc.4960130809 (checked 18 October 2026)
  • PubChem, National Center for Biotechnology Information. Adenosine triphosphate, CID 5957 (molar mass 507.18 g/mol). https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/5957 (checked 18 October 2026)
  • RCSB PDB-101, Molecule of the Month: ATP Synthase. https://pdb101.rcsb.org/motm/72 (checked 16 October 2026)

Текст и симуляция: CC BY-NC-SA 4.0, если не указано иное.

Реклама

Встроить экспонат

Вставьте этот код в веб-страницу или запись в блоге, и там появится действующая модель.

Бесплатно для некоммерческого использования. Сохраните строку с источником. Текст и симуляция: CC BY-NC-SA 4.0, если не указано иное.

Размер

Встроенный экспонат откроется на русском. Для другого языка переключите эту страницу на него и скопируйте код там.